نوع مقاله : مقاله پژوهشی کامل
نویسندگان
1 دانشکده شیمی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، کد پستی ۶۸۱۳۷۱۷۱۳۳، ایران
2 گروه فارماکولوژی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، کد پستی ۱۴۷۶۶۵۱۶۶۴، ایران
3 گروه شیمی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران
4 گروه پاتولوژی، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، تبریز، ایران
چکیده
یک روش ساده، سریع و مقرون به صرفه برای تعیین 17-β-استرادیول در نمونه های آب توسعه داده شد. این روش مبتنی بر استخراج کمپلکس 17-β-استرادیول- β-سیکلودکسترین با استفاده از یک فاز کواسروای متشکل از میسل های معکوس اسید دکانوئیک و به دنبال آن کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا با تشخیص اشعه ماوراء بنفش برای تعیین مقدار است. اثرات پارامترهای کلیدی، از جمله غلظت اسید دکانوئیک (50 تا 200 میلی‌گرم در حجم کل 30 میلی‌لیتر)، غلظت تتراهیدروفوران (1-15 درصد حجمی)، نسبت مولی بتا سیکلودکسترین به 17-β-استرادیول (1:1-1:4)، قدرت یونی 0-1 مولارNaCl، pH 1-4 و زمان استخراج (0-30دقیقه) روی شرایط استخراج بهینه و فاکتور تغلیظ مطالعه شد. شرایط استخراج بهینه نمونه آب 20 میلی لیتری حاوی 50 میلی گرم اسید دکانوئیک با 3 میلی لیترTHF، با استفاده از نسبت مولی 17-β-استرادیول به 17-β-استرادیول (1:3) برای مدت 10 دقیقه و به دنبال آن سانتریفوژ 4000 دور در دقیقه بود 17-β-استرادیول در درجه اول تحت تأثیر غلظت اسید دکانوئیک و THF بود که فاز کواسروای را تشکیل می دهند، اما مستقل از قدرت یونی محلول نمونه باقی ماند. نرخ بازیابی، فاکتور غنی‌سازی، حد تشخیص و انحراف استاندارد نسبی برای 17--βاسترادیول به ترتیب 95 درصد ، 284، μg/L 0.19 و 4.34 درصد بود. این روش برای تجزیه و تحلیل 17-β-استرادیول در نمونه های آب شهری، آب معدنی و آب شیرین استفاده شد. هیچ 17-β-استرادیول در آب معدنی شناسایی نشد، در حالی که غلظت آن در آب شهری و آب شیرین به ترتیب 1.9 μg/L و 33.67 μg/L بود.
کلیدواژه‌ها
REFERENCES
- Song and X.S. Feng. Sample preparation and analytical methods for steroid hormones in environmental and food samples: An update since 2012. Crit. Rev. Anal. Chem. 53 (2023) 69-81.
- Hu. M. He. B. Chen. Ch. Zhong and B. Hu. Polydimethylsiloxane/metal-organic frameworks coated stir barsorptive extraction coupled to high performance liquid chromatography-ultraviolet detector for the determination of estrogens in environmental water samples. J. Chromatogr. A. 1310 (2013) 21– 30.
- Watabe. T. Kubo. T. Nishikawa. T. Fujita. K. Kaya and K. Hosoya. Fully automated liquid chromatography–mass spectrometry determination of 17-β-estradiol in river water. J. Chromatogr. A. 1120 (2006) 252–259.
- . Socas-Rodrıguez. M. Asensio-Ramos. J. Hernandez-Borges. A.V. Herrera-Herrera and M.A. Rodrıguez-Delgado. Chromatographic analysis of natural and synthetic estrogens in milk and dairy products. Trends Anal. Chem. 44 (2013) 58-77.
- Barreiros. J.F. Queiroz. L.M. Magalhães. A.M.T. Silva and M.A. Segundo. Analysis of 17-β-estradiol and 17-α-ethinylestradiol in biological and environmental matrices-A review. Microchem. J. 126 (2016) 243–262.
- Tomsikova. J. Aufartova. P. Solich. Z. Sosa-Ferrera. J.J. Santana-Rodrıguez and L. Novakova. High-sensitivity analysis of female-steroid hormones in environmental samples. Trends Anal. Chem. 34 (2012) 35-58.
- Sanchez-Prado. C. Garcia-Jares. Th. Dagnac and M. Liompart. Microwave-assisted extraction of emerging pollutants in environmental and biological samples before chromatographic determination. Trends Anal. Chem. 27 (2015) 119-143.
- Wojnarowski. P. Cholewinska. D. Palic. M. Bednarska. M. Jarosz and I. Wisniewska. Estrogen receptors mediated negative effects of estrogens and xenoestrogens in teleost fishes- review, Int. J. Mol. Sci. 23 (2022) 1-17.
- Scognamiglio. A. Antonacci. L. Patrolecco. M.D. Lambreva. S.C. Litescu. S.A. Ghuge and G. Rea. Analytical tools monitoring endocrine disrupting chemicals. Trends Anal. Chem. 80 (2016) 555-567.
- Patrolecco. N. Ademollo. P. Grenni. A. Tolomei. A.B. Caracciolo and S. Capri. Simultaneous determination of human pharmaceuticals in water samples by solid phase extraction and HPLC with UV-fluorescence detection. Microchem. J. 107 (2013) 165–171.
- R. Yakupova. S.A. Lebedinets. K.S. Vakh and S.Yu. Garmonov. Microextraction of 17-β-estradiol from medicinal preparations for the subsequent determination by HPLC-UV. J. Anal. Chem. 77 (2022) 342-346.
- . Ganan. D. Perez-Quintanilla. S. Morante-Zarcero and I. Sierra. Comparison of different mesoporous silicas for off-line solid phaseextraction of 17-β-estradiol from waters and its determination by HPLC-DAD. Hazard. Mater. 260 (2013) 609– 617.
- Feng. L. Ning and L. Xiao-Li. Simultaneous determination of hexoestrol, diethylstilbestrol, estrone and 17-Beta-estradiol in feed by gas chromatography-mass spectrometry. J. Northeast. Agric. Univ. 23 (2016) 44-49.
- C. Schofield. D.R. Mendu. L.V. Ramanathan. M.S. Pessin and D.C. Carlow. Sensitive simultaneous quantitation of testosterone and estradiol inserum by LC–MS/MS without derivatization and comparison with the CDC HoSt program. J. Chromatogr. B. 1048 (2017) 70–76.
- D. LaFleur and K.A. Schug. A review of separation methods for the determination of estrogens and plastics-derived estrogen mimics from aqueous systems. Anal. Chim. Acta. 696 (2011) 6–26.
- Yilmaz and Y. Kadioglu. Determination of 17-β-estradiol in pharmaceutical preparation by UV spectrophotometry and high performance liquid chromatography methods. Arab. J. Chem. 10 (2017) S1422-S1428.
- .L. Baez. A. Garcia. I. Martinez. Ch. Gonzalez and M. Gomez. Electrochemical detection of 17-β-estradiol and bisphenol A using graphene oxide and reduced graphene oxide modified electrodes: A review. J. Electrochem. Sci. 19 (2024) 1-14.
- A. Lahcen. A.A. Baleg. P. Baker and E. Iwuoha. A. Amine. Synthesis and electrochemical characterization of nanostructuredmagnetic molecularly imprinted polymers for 17-β-Estradiol determination. Sens. Actuator B. 241 (2017) 698–705.
- Jia. X. Yang and Z. Li. Synthesis and application of colloidal beta-cyclodextrin-1 decorated silver nanoparticles for rapid determination of malachite green in environmental water using surface-enhanced Raman spectroscopy. RSC Adv. 17 (2016) 33-43.
- Orlandini. B. Pasquini. C. Caprini. M.D. Bubba. M. Dousa. S. Pinzauti and S. Furlanetto. Enantioseparation and impurity determination of ambrisentan using cyclodextrin- modified micellar electrokinetic chromatography: visualizing the design space within quality by design framework. J. Chromatogr. A. 1467 (2016) 363-371.
- .L. Giokas. E.K. Paleologos and M.L. Karayannis. Micelle-mediated separation and cloud-point extraction. Trends Anal. Chem. 24 (2005) 426-436.
- Melnyk. J. Namiesnik and L. Wolska. Theory and recent applications of coacervate-based extraction techniques. Trends Anal. Chem. 71 (2015) 282-292.
- L. Higashi and M. Ikeda. Coacervates composed of low-molecular-weight compounds–molecular design, stimuli responsiveness, confined reaction. Adv. Biol. 24 (2025) 1-10.
- Hosseinzadeh. K.h. Khorsandi and S. Hemmaty. Study of the effect of surfactants on extraction and determination of polyphenolic compounds and antioxidant capacity of fruits extracts. Plos One. 8 (2013) 1-7.
- Jain. D. Thakur. G. Ghoshal. O.P. Katare and U.S. Shivhare. Characterization of microcapsulated β-carotene formed by complexcoacervation using casein and gum tragacanth. Int. J. Biol. Macromol. 87 (2016) 101–113.
- Wang. J. Wang. X. Chen. L. Du and F. Li. Quercetin-loaded freeze-dried nanomicelles: Improving absorption and anti-glioma efficiency in vitro and in vivo. J. Control. Release. 235 (2016) 276–290.
- C. Chang and S.D. Huang. Determination of the steroid hormone levels in water samples by dispersive liquid–liquid microextraction with solidification of a floating organic drop followed by high-performance liquid chromatography. Anal. Chim. Acta. 662(1) (2010) 39–43.
- D. Orazio. J.H. Borges. A.V.H. Herrera. S. Fanali and M.A.R. Delgado. Determination of estrogenic compounds in milk and yogurt samples by hollow-fibre liquid-phase microextraction-gas chromatography-triple quadrupole mass spectrometry. Anal. Bioanal. Chem. 408 (2016) 7447–7459.
- Wang. P. Huang. X. Ma. X. Du and X. Lu. Enhanced in-out-tube solid-phase microextraction by molecularly imprinted polymers-coated capillary followed by HPLC for endocrine disrupting chemicals analysis. Talanta. 194 (2019) 7-13.
- C. Schofield. D.R. Mendu. L.V. Ramanathan. M.S. Pessin and D.C. Carlow. Quantification of Dehydroepiandrosterone, 17β-Estradiol, Testosterone, and their sulfates in mouse tissues by LC-MS/MS. J. Chromatogr. B. 1048 (2017) 70–76.
)